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大鼠原代肺動脈平滑肌細(xì)胞的分離培養(yǎng)方法及注意事項(xiàng)!
小楊 / 2025-12-01 09:41:59

 

大鼠原代肺動脈平滑肌細(xì)胞的分離培養(yǎng)是獲取高純度、高活性細(xì)胞的核心步驟,以下是標(biāo)準(zhǔn)化的操作流程,涵蓋原理、操作步驟、注意事項(xiàng)、常見問題及解決方法,可直接用于實(shí)驗(yàn)參考:
 
一、核心原理
 
通過機(jī)械分離結(jié)合酶消化法,解離大鼠肺動脈組織中的細(xì)胞外基質(zhì),釋放平滑肌細(xì)胞;利用貼壁特性和差速貼壁法去除雜細(xì)胞(如內(nèi)皮細(xì)胞、成纖維細(xì)胞),最終獲得純化的 RPASMCs。
 
二、實(shí)驗(yàn)材料準(zhǔn)備
 
實(shí)驗(yàn)動物:SPF 級 SD 大鼠(8-12 周齡,體重 200-250g),雌雄均可(根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求選擇)。
 
試劑:
 
基礎(chǔ)培養(yǎng)基:DMEM/F12(1:1)或 DMEM 高糖型;
 
消化液:0.1% Ⅰ 型膠原酶 + 0.25% 胰蛋白酶(無 EDTA)混合液(現(xiàn)配現(xiàn)用);
 
完全培養(yǎng)基:基礎(chǔ)培養(yǎng)基 + 10% 胎牛血清(FBS) + 1% 青霉素 - 鏈霉素雙抗;
 
其他:PBS(無鈣鎂)、75% 乙醇、臺盼藍(lán)染液、α-SMA 免疫熒光染色試劑盒。
 
耗材與儀器:
 
無菌手術(shù)器械(眼科鑷、眼科剪、顯微鑷、顯微剪)、60mm 培養(yǎng)皿、培養(yǎng)瓶、離心管;
 
超凈工作臺、CO?培養(yǎng)箱(37℃、5% CO?)、離心機(jī)、倒置顯微鏡。
 
三、詳細(xì)操作步驟
 
步驟 1:動物處死后處理(無菌操作)
 
大鼠經(jīng)頸椎脫臼法處死,75% 乙醇浸泡全身消毒 5min,轉(zhuǎn)移至超凈工作臺;
 
無菌剪開胸腔,暴露心肺組織,快速分離肺動脈干及肺內(nèi)分支(避開支氣管和肺實(shí)質(zhì)),放入預(yù)冷的無菌 PBS(含雙抗)中漂洗,去除血液和結(jié)締組織。
 
步驟 2:組織消化
 
用顯微剪將肺動脈組織剪切成 1mm³ 左右的小塊,轉(zhuǎn)移至 15mL 離心管;
 
加入 5mL 預(yù)溫(37℃)的膠原酶 - 胰蛋白酶混合消化液,37℃搖床(100rpm)消化 30-40min,期間每隔 10min 輕晃離心管;
 
鏡下觀察:當(dāng)組織塊邊緣模糊、有少量細(xì)胞游離時,加入等體積完全培養(yǎng)基終止消化。
 
步驟 3:細(xì)胞收集與接種
 
用 100 目細(xì)胞篩過濾消化液,去除未消化的組織塊,收集濾液至離心管;
 
1000rpm 離心 5min,棄上清,用 2mL 完全培養(yǎng)基重懸細(xì)胞沉淀;
 
將細(xì)胞懸液接種至 60mm 無菌培養(yǎng)皿,加入 3mL 完全培養(yǎng)基,輕輕搖勻;
 
放入 37℃、5% CO?培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng),24h 內(nèi)不移動培養(yǎng)皿(避免影響細(xì)胞貼壁)。
 
步驟 4:細(xì)胞純化與傳代
 
差速貼壁純化:接種 24h 后,吸棄上清(去除未貼壁的內(nèi)皮細(xì)胞、紅細(xì)胞),加入新鮮完全培養(yǎng)基;48h 后再次換液,可去除大部分成纖維細(xì)胞;
 
首次換液后,每 2-3 天換液 1 次,待細(xì)胞融合至 80%-90% 時進(jìn)行傳代;
 
傳代操作:吸棄培養(yǎng)基→PBS 漂洗 2 次→加入 0.25% 胰蛋白酶(含 EDTA)消化 1-2min→鏡下見細(xì)胞收縮變圓時,加入完全培養(yǎng)基終止→吹打形成單細(xì)胞懸液→1000rpm 離心 5min→重懸后按 1:2 比例接種至新培養(yǎng)瓶。
 
步驟 5:細(xì)胞鑒定
 
傳代至第 2-3 代時,采用 α-SMA 免疫熒光染色鑒定:
 
細(xì)胞接種至爬片,融合至 70% 時固定、通透、封閉;
 
加入 α-SMA 一抗(1:200)4℃孵育過夜,熒光二抗(1:500)室溫孵育 1h;
 
DAPI 染核后,熒光顯微鏡觀察:細(xì)胞質(zhì)呈特異性綠色熒光,細(xì)胞核藍(lán)色,陽性率≥90% 即為合格。
 
四、關(guān)鍵注意事項(xiàng)
 
無菌操作:全程在超凈工作臺完成,手術(shù)器械需高壓滅菌,試劑需無菌過濾,避免支原體/細(xì)菌污染;
 
消化時間:消化不足會導(dǎo)致細(xì)胞釋放少,過度消化會損傷細(xì)胞活性,需鏡下實(shí)時觀察;
 
溫度控制:PBS、消化液、培養(yǎng)基均需預(yù)溫至 37℃,避免低溫刺激細(xì)胞;
 
動物選擇:優(yōu)先選擇幼齡大鼠(8-12 周齡),老年大鼠肺動脈組織纖維化嚴(yán)重,細(xì)胞活性低;
 
純化時機(jī):首次換液必須在 24h 內(nèi)完成,否則內(nèi)皮細(xì)胞貼壁后難以去除,影響純度。
 
五、常見問題及解決方法
 
問題           原因              解決方法
 
細(xì)胞貼壁率低  消化過度/溫度過低  縮短消化時間至 30min 內(nèi),所有試劑預(yù)溫 37℃
 
雜細(xì)胞過多  差速貼壁不及時  24h 內(nèi)首次換液,第 3 代后可采用有限稀釋法純化
 
細(xì)胞增殖緩慢  血清質(zhì)量差/培養(yǎng)箱參數(shù)異常  更換優(yōu)質(zhì) FBS,校準(zhǔn)培養(yǎng)箱 CO?濃度(5%)和溫度
 
細(xì)胞污染  無菌操作不嚴(yán)格  丟棄污染細(xì)胞,重新操作,加強(qiáng)器械/試劑滅菌
 
六、實(shí)驗(yàn)后處理
 
未使用的細(xì)胞可凍存:凍存液(完全培養(yǎng)基: DMSO=9:1),梯度降溫后放入液氮保存;
 
實(shí)驗(yàn)廢棄物(動物組織、離心管)按生物安全規(guī)范處理,避免污染。
 
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